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19 人阅读发布时间:2026-01-21 11:03
在心血管疾病、药效学评价及代谢综合征等研究中,小鼠和大鼠的血压数据是不可或缺的关键指标。许多玉研无创血压计的用户已借助这套系统高效获取高质量数据,并成功发表多篇高水平科研论文!然而,在日常使用中,即便您已熟悉基本操作流程,是否仍遇到过以下情况:
l 动物安静却测不出有效波形?
l 高血压模型的数值总是偏低?
l 同一批动物重复测量结果波动较大?
其实,这些问题往往并非性能问题,而是源于一些容易被忽略的操作细节。作为专为科研设计的高精度无创血压平台,玉研NIBP无创血压测量系统在提供稳定硬件的同时,也赋予用户充分的参数调节自由度——用得好,才能测得准。
今天,我们结合大量用户反馈与技术团队经验,为您整理6条实用操作小Tips,帮助您充分发挥设备潜力,获得更可靠、可重复的血压数据!
很多新手会误以为“温度越高,动物越放松,测得越准”。其实不然!过高的环境温度(如36℃以上)反而会引起动物热应激反应,导致心率加快、血管扩张,进而干扰真实血压值。
玉研NIBP无创血压测量系统采用一体化恒温仓设计,推荐预热温度为32℃。这一温度既能有效扩张尾动脉、提高信号信噪比,又不会引发明显的应激反应。建议提前10分钟开启恒温功能,待仓内温度稳定后再放入动物。

不同体重的大小鼠,其尾部粗细差异显著。若传感器或固定筒(鼠筒)过大,会导致尾部晃动、信号丢失;过小则压迫组织,影响血流甚至造成损伤。
根据玉研仪器推荐:
• 小鼠(10–25g):选用NIBP-M-S鼠筒 + NIBP-S-M00传感器
• 小鼠(35–45g):选用NIBP-M-M鼠筒 + NIBP-S-M01传感器
• 大鼠(160–300g):选用NIBP-R-S鼠筒 + NIBP-S-R02传感器
• 大鼠(400g以上):选用NIBP-R-L鼠筒 + NIBP-S-R03传感器
务必根据动物实际体重匹配对应型号,切勿“一套通用”。此外,固定器采用纯黑亚克力材质,可有效隔绝外界光线干扰,帮助动物更快安静下来。


一次完整的无创血压测量包含充气加压、缓慢泄压、脉搏波捕捉等多个步骤,整个过程约需15秒。若动物在此期间躁动,系统可能无法识别有效脉搏波,导致单次测量失败。
但请注意:不要频繁连续多次重测!频繁充气加压会造成尾部缺血、疼痛,增加应激,后续数据将严重失真。
正确做法是:
l 在软件中预设最大重测次数为5–6次;
l 若连续失败,应将动物放回饲养笼休息10–15分钟后再试;
l 每只动物单日测量不超过3轮,以保障动物福利与数据可靠性。
很多用户只看软件输出的收缩压、舒张压数值,却忽略了原始脉搏波与泄压曲线的可视化分析。其实,波形质量才是判断数据是否可信的关键!
优质测量应呈现:
l 清晰、规律的脉搏波序列;
l 泄压过程中振幅由无到有、逐渐增大至平台期;
l 无明显杂波或突跳干扰。
若波形杂乱、基线漂移或脉搏缺失,即使软件给出了数值,也应视为无效数据,需排查原因(如传感器松动、动物移动、温度不足等)。

这是许多用户容易忽略却极为关键的一点:标准默认的起始充气压力(180 mmHg)并不适用于所有动物模型。
例如:
l 高血压模型(如SHR大鼠、Ang II诱导小鼠):真实收缩压可能超过200 mmHg,若起始压力不足,系统在未完全阻断血流前就开始泄压,将低估真实血压值;
l 低血压或休克模型(如脓毒症、药物诱导低血压):若起始压力过高,不仅延长测量时间,还会加剧尾部缺血应激。
因此,建议根据预实验或文献数据,手动调整起始压力范围:
l 高血压模型:可设为200–240 mmHg;
l 正常动物:180–200 mmHg;
l 低血压模型:120–150 mmHg。
虽然无创系统无需侵入体内,但其核心部件——光电传感器和气路系统——仍需定期维护:
l 每月用棉片清洁传感器窗口,避免毛发或污渍遮挡光路;
l 定期检查气管是否老化、漏气;
良好的设备状态,是获得可重复科研数据的基础。
小动物无创血压测量看似“一键完成”,实则暗藏诸多技术细节。从环境控制、器材匹配到数据分析,每一个环节都值得用心对待。掌握上述小Tips,不仅能提升单次实验的成功率,更能确保长期研究中数据的一致性与科学性。
玉研仪器NIBP系列凭借低预热温度、高灵敏度光电传感、多通道同步采集及灵活的压力参数设置等优势,已成为众多高校与科研机构的选择。无论你是药理学研究生、心血管课题负责人,还是实验动物中心技术员,希望这篇文章能为你的日常操作带来切实帮助!